SDS 裂解液說明書

SDS 裂解液

產品簡介：

多種成分均可以從細胞中提取總蛋白，例如 Triton、SDS、NP-40 等。SDS 裂解液 (SDS

Lysis Buffer)是一種枀其強烈的細胞組織快速裂解液并獲得總蛋白質。其裂解液強度大于

NP-40 裂解液、RIPA 裂解液(弱)、RIPA 裂解液(中)、通用細胞裂解液、Western 及 IP 細

胞裂解液，所獲得的蛋白質可以用于 Western、染色質免疫共沉淀(ChIP)等。

SDS Lysis Buffer 主要由 Tris-HCl、NaCl、SDS 等組成，并含有多種蛋白酶

抑制劑成分，可以有效抑制蛋白的降解，并維持原有的蛋白間相互作用。

產品組成： 

 操作步驟(僅供參考)：

(一)貼壁培養細胞

1、取 SDS Lysis Buffe 室溫溶解混勻，使用前取適量裂解液加入PMSF，使終濃度為1mM。

2、去除貼壁細胞的培養液，用PBS、NS或無血清培養液清洗1次，低速離心，棄上清，

留取沉淀。  

3、按照 6孔板每孔加入150～250μl 含有PMSF的裂解液的比例加入SDS Lysis Buffer 。

移液器輕輕吹打，使裂解液和細胞充分接觸。通常裂解液作用于細胞1～3s 內，細胞就

會被裂解。如果是所提蛋白樣品用于CHIP, 應置于冰上或4℃裂解15～30min。通常6

孔板每孔細胞加入 150μl 裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。

4、10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

5、進行后續的Western、染色質免疫共沉淀(ChIP)等操作。

(二)懸浮培養細胞

1、取 SDS Lysis Buffer置于室溫溶解混勻后，使用前取適量裂解液加入 PMSF，使其終濃度為1mM。

2、低速離心懸浮細胞，棄上清，收集沉淀。

3、用手指輕彈細胞，使其松散。按照6孔板每孔細胞加入150～250μl含有PMSF 的裂解液的比例，加入SDS Lysis Buffer。通常6孔板每孔細胞加入150μl裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。再用手指輕彈以充分裂解細胞，充分裂解后應沒有明顯的細胞沉淀。通常裂解液作用于細胞1～3s 內，細胞就會被裂解。如果是所提蛋白樣品用于CHIP, 置于冰上或4℃裂解15～30min。

4、10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

5、進行后續的Western、染色質免疫共沉淀(ChIP)等操作。

(三)組織樣本

1、取SDS Lysis Buffer置于室溫溶解混勻，使用前取適量裂解液加入PMSF，使其終濃度為1mM。

2、把組織剪切成細小的碎片，越小越好。

3、取在液氮或超低溫冰箱中冷凍30min以上的組織，迅速用液氮研磨，研磨過程盡量控

制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。

4、按 20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃裂

解15～30min。如果是所提蛋白樣品用于CHIP,置于冰上或4℃繼續裂解10～20min。

5、步驟 3、4亦可以采用如下過程：按照每20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF 的SDS Lysis Buffer。用玻璃勻漿器或組織研磨器勻漿，直至充分裂解，過程盡量控制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。如果是所提蛋白樣品用于CHIP, 應置于冰上或4℃繼續裂解10～20min。

6、10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。

7、進行后續的Western、染色質免疫共沉淀(ChIP)等操作。

注意事項：

1、去除貼壁細胞的培養液后，如果血清中的蛋白沒有干擾，可以不用清洗。

2、如果裂解不充分可以適當增加裂解液的用量，如果需要高濃度的蛋白樣品，可以適當減

少裂解液的用量。

3、在培養細胞的裂解中，如果細胞量較多，必需分裝成50-100 萬細胞/離心管，然后再裂

解。少量的細胞由于裂解液容易和細胞充分接觸，相對比較容易裂解充分。

4、如果組織樣品本身非常細小，可以適當剪切后直接加入裂解液裂解，通過強烈Vortex

使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清，用于后續實驗。直接裂解的優點是比較方便，

不必使用勻漿器，缺點是不如使用勻漿器那樣裂解得比較充分。

5、溶解SDS Lysis Buffer時，應盡量縮短溶解時間，避免裂解液中的有效成分失效。

6、細胞裂解的操作步驟，應置于冰上或 4℃進行。

有效期：12 個月有效。