• <menu id="442ka"><code id="442ka"></code></menu>
  • 技術文章

    Technical articles

    當前位置:首頁技術文章血液/細胞/組織基因組DNA提取試劑盒說明書

    血液/細胞/組織基因組DNA提取試劑盒說明書

    更新時間:2021-04-12點擊次數:2180

    產品簡介

          本試劑盒采用可以特異性結合DNA的離心吸附柱和*的緩沖液系統,提取多種細胞中的基因組DNA。離心吸附柱中采用的硅基質材料為本公司*新型材料,高效、專一吸附DNA,可最大限度去除雜質蛋白及細胞中其他有機化合物。提取的基因組DNA段大,純度高,質量穩定可靠。

        使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規操作,包括酶切、PCR、文庫構建、Southern雜交等實驗。

    產品特點:

    簡單快速:1 h內即可獲得超純的基因組DNA。

    泛:適用于血液、多種動物細胞和動物組織等。

    純:獲得的DNA純度高,可直接用于PCR、酶切、雜交等分子生物學實驗。

    注意事項 請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項。

    1. 使用前應按照試劑瓶標簽的說明先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇。

    2. 樣品應避免反復凍融,否則會導致提取的DNA段較小且提取量也下降。

    3. 若緩沖液GAGB中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,搖勻后使用。

    4. 所有離心步驟均為使用臺式離心機,室溫下離心。

     操作步驟

    使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇,加入體積請參照瓶上的標簽。

    1. 處理材料

    a. 如提取材料為血液,可直接使用200 μl新鮮、冷凍或加入各種抗凝劑的血液,不足200 μl

    可加緩沖液GA補足;

    注意:如需處理更大體積血液,如300 μl-1 ml,應按以下步驟操作:在樣品中加入3倍體積紅細胞裂解液 (例如,300 μl血液加入900 μl紅細胞裂解液),顛倒混勻, 室溫放置5 min,期間再顛倒混勻幾次。10000 rpm(~11,500×g)離心1 min(若離心機高轉速不允許,可3000 rpm(~3,400×g)離心5 min),吸去上清,留下白細胞沉淀,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*混勻。

    紅細胞裂解液本公司另外有售(目錄號:RT122),可根據需要來決定購買。

    b. 如果處理血樣為禽類、鳥類、兩棲類或更低級生物的抗凝血液,其紅細胞為有核細胞,因此處理量5-20 μl,可加緩沖液GA補足200 μl后進行下面的裂解步驟。

    c. 貼壁培養的細胞應先處理為細胞懸液,然后10,000 rpm(~11,200×g)離心1 min,倒盡上清,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*懸浮;

    d. 動物組織(脾組織用量應少10 mg)應先打碎處理為細胞懸液,然后10,000 rpm(~11,200×g)離心1 min,倒盡上清,加200 μl緩沖液GA,振蕩至*懸浮。

    注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNaseA100 mg/ml)溶液(客戶自備,目錄號:RT405-12),振蕩15 sec,室溫放置5 min

    2. 加入20 μl Proteinase K溶液,混勻。

    a. 提取血液基因組時,只需加入Proteinase K混勻,即可繼續進行下一步。

    b. 提取細胞基因組時,只需加入Proteinase K混勻,即可繼續進行下一步。

    c. 提取組織基因組時,加入Proteinase K混勻后,在56℃放置,直至組織溶解,簡短離心以去除管蓋內壁的水珠,再進行下一步驟。

    注意:不同組織裂解時間不同,通常需1-3 h即可完成(鼠尾需要消化過夜)。不會影響后續操作。每小時顛倒混合樣品2-3次,用水浴振蕩器也可。

    3.加入200 μl緩沖液GB,充分顛倒混勻,70℃放置10 min,溶液應變清亮,簡短離心以去除管蓋內壁的水珠。

    注意:加入緩沖液GB時可能會產生白色沉淀,一般70℃放置時會消失,不會影響后續實驗。如溶液未變清亮,說明細胞裂解不*,可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。當血液體積≤200 μl且沒有采用紅細胞裂解處理,或是樣本儲存條件不佳,水浴后顏色可能為深褐色,注意溶液中沒有團塊等沉淀。

    4.加人200 μl 無水乙醇,充分振蕩混勻15 sec,此時可能會出現絮狀沉淀,簡短離心以去除管蓋內壁的水珠。

    5.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個吸附柱CB3吸附柱放入收集管中, 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放回收集管中。

    6.向吸附柱CB3中加入500 μl緩沖液GD 使用前請先檢查是否已加入無水乙醇)12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放入收集管中。

    7.向吸附柱CB3中加入600 μl 漂洗液PW使用前請先檢查是否已加入無水乙醇, 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,倒掉廢液,將吸附柱CB3放入收集管中。

    8.. 重復操作步驟7。

    9.將吸附柱CB3放回收集管中,12,000 rpm(~13,400×g)離心2 min,倒掉廢液。將吸附柱CB3置于室溫放置數分鐘,以*晾干吸附材料中殘余的漂洗液。

    注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應(酶切、PCR等)實驗。

    10.將吸附柱CB3轉入一個干凈的離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加50-200 μl洗脫緩沖液TE,室溫放置2-5 min12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min,將溶液收集到離心管中。

    注意:洗脫緩沖液體積不應少于50 μl,體積過小影響回收效率。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用ddH2O做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內,pH值低于7.0會降低洗脫效率;且DNA產物應保存在-20℃,以防DNA降解。為增加基因組DNA 的得率,可將離心得到的溶液再加入吸附柱CB3中,室溫放置2 min,12,000 rpm (~13,400×g )離心2 min。

     

     

    eeuss草民免费